Catalogue sous-programme

2 X par an
3-9 Lames

Papanicolaou: lame non gynécologique conventionnelle et milieu liquide, lame gynécologique en milieu liquide (campagne A seulement)
Coloration de routine: lame préparée à partir d'un bloc cellulaire paraffiné

Échantillon gynécologique (milieu liquide), Échantillon respiratoire (bloc cellulaire paraffiné), Échantillon respiratoire (lames conventionnelles, milieu liquide), Liquide péritonéal (bloc cellulaire paraffiné), Liquide péritonéal (lames conventionnelles, milieu liquide), Liquide pleural (bloc cellulaire paraffiné), Liquide pleural (lames conventionnelles, milieu liquide), Thyroïde (bloc cellulaire paraffiné), Thyroïde (lames conventionnelles, milieu liquide), Urine (bloc cellulaire paraffiné), Urine (lames conventionnelles, milieu liquide)

Qualitatifs

Évaluer la performance des participants lors de la préparation de colorations de cytopathologie.

NOUVEAUTÉ 2026 : Lame gynécologique en milieu liquide

Les entités doivent être fournies par les participants.
L'installation inscrite pourra soumettre des lames d'étalement, de cytocentrifugation ou de milieu liquide pour la coloration Papanicolaou et/ou les lames de bloc cellulaire en fonction de la coloration de routine utilisée et de la disponibilité des différentes sources d'échantillons demandées.
Les lames seront préparées et colorées par les participants. Aucune entité ne sera fournie par le LSPQ.

Valeurs de référence, déterminées par analyse et comparaison de l’entité soumise à l’essai d’aptitude avec les résultats établis dans la littérature.

• Échantillon contaminé : Des échantillons contaminés par des bactéries, des champignons ou d'autres substances étrangères peuvent affecter la coloration. De plus, des conditions environnementales inadéquates, telles que la contamination de l'échantillon par la poussière ou d'autres polluants, peuvent entraîner des erreurs.
• Artéfacts de coloration : Les artéfacts de coloration peuvent survenir lors de la préparation de la lame, de la fixation ou de la coloration, ce qui peut rendre l'interprétation difficile.
• Échantillon insuffisant : Parfois, la quantité de cellules prélevées peut être insuffisante pour une évaluation précise, ce qui peut conduire à des résultats incertains.
• Fixation cellulaire inappropriée : Une fixation inadéquate peut entraîner une dégradation des cellules et une mauvaise coloration.
• Problèmes de déshydratation : Une déshydratation excessive ou insuffisante des échantillons peut affecter la qualité de la coloration.
• Temps d’exposition inapproprié aux colorants : Un temps d’exposition insuffisant ou excessif aux colorants peut entraîner une coloration inégale ou une surcoloration.
• Erreur de rinçage : Un rinçage inadéquat peut entraîner une contamination des colorants, une coloration non spécifique ou une coloration trop pâle.
• Mauvaise préparation des solutions de colorants : Des concentrations inexactes de colorants peuvent affecter la qualité et la spécificité de la coloration.

Aucun élément sous-traité

Paramètres et principes analytiques potentiellement couverts :

Paramètres analytiques	Principes analytiques
60471 - Frottis non-gynécologique ou cytocentrifugation (préparation et coloration)	Préparation - Lame conventionnelle Coloration Cyto/Histochimique
60445 - Cytologie liquide (gynécologique) (coloration)	Coloration Cyto/Histochimique
60446 - Cytologie liquide (non gynécologique) (coloration)	Coloration Cyto/Histochimique
60455 - Préparation de blocs cellulaires (enrobage dans agar)	Préparation - Bloc cellulaire paraffiné
60441 - Cytologie gynécologique en milieu liquide (préparation)	Préparation - Lame milieu liquide
60442 - Cytologie non gynécologique en milieu liquide (préparation)	Préparation - Lame milieu liquide
60200 - Coloration de routine, tissu paraffiné	Microtomie - Lame bloc cellulaire Microtomie - Lame tissu paraffiné Coloration Cyto/Histochimique Examen microscopique - Coloration histochimique